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Fluido perivitelino

De Wikipedia, la enciclopedia libre

El fluido perivitelino es un fluido extracelular encontrado en los huevos de la mayoría de los gasterópodos y constituye la fuente principal de nutrición y defensa para sus embriones. Este fluido reemplaza al vitelo de los huevos de otros animales, el cual en los huevos de caracol está reducido a gránulos proteicos no nutritivos con probable función enzimática.[1]

Durante el desarrollo embrionario, el fluido perivitelino es ingerido macropinocíticamente por los embriones y los fagosomas resultantes se fusionan con los gránulos β que contienen enzimas hidrolíticas, las cuales digieren los componentes del fluido perivitellno.[1][2]

Origen

El fluido perivitelino es sintetizado por la glándula del albumen de los caracoles hembra (también conocida como complejo glándula del albumen-glándula de la cápsula o glándula uterina), una glándula accesoria del tracto reproductor femenino. Los oocitos fertilizados ingresan a la glándula del albumen y, en su camino hacia el exterior, son recubiertos con el fluido perivitelino.[1][3]​ La cantidad de fluido perivitelino del huevo varía considerablemente entre distintas especies. Sin embargo, es constante dentro de cada especie.[4]​ En este sentido, ha sido demostrado en los caracoles manzana del género Pomacea que durante la estación reproductiva, cuándo los precursores de los nutrientes en la glándula del albumen disminuyen debido a oviposiciones repetidas, las hembras tienden a reducir el número de huevos por puesta pero no la cantidad de nutrientes en cada huevo.[5]

Composición

El fluido perivitelino contiene predominantemente galactógeno, proteínas, y calcio.[4][6][7][8]

Los carbohidratos son, invariablemente, el componente más abundante del fluido perivitelino. Específicamente, los huevos de la mayoría de los gasterópodos acumulan el polisacárido de reserva galactógeno, el cual proporciona la fuente de energía principal para el embrión en desarrollo.[4][6][7][8][9]​ Una cantidad pequeña de glucosa soluble fue también detectada en algunas especies.

Las proteínas, llamadas perivitelinas, es el segundo componente más abundante del fluido perivitelino. Las perivitelinas son también una fuente de nutrientes para los embriones de caracol, y tiene un rol en la protección contra patógenos y depredadores, incluyendo proteínas no-digeribles, toxinas e inhibidores de proteaseas.[7][10][8][11][12]​ Estas proteínas fueron estudiadas exhaustivamente en los caracoles manzana del género Pomacea, donde fueron originalmente agrupadas en tres fracciones. Dos de estas fracciones son las más abundantes, la perivitelina-1 o PV1 y la perivitelina-2 o PV2 (comprendiendo aproximadamente el 70% de proteína total). La tercera es una fracción heterogénea denominada perivitelina-3 o fracción PV3.[13][14]​ Análisis proteómicos recientes demostraron que el fluido perivitelino de los caracoles Pomacea tiene entre 34-38 proteínas diferentes con una gran variedad de funciones.[15]

Los lípidos son un componente menor en el fluido perivitelino, mayoritariamente representados por lípidos de membrana, indicando que los caracoles no utilizan lípidos como reserva de energía importante durante la reproducción.[7][8]​ Aparte de lípidos estructurales, algunos huevos también contienen pigmentos carotenoides, principalmente astaxantina.[12][14]​ Estos pigmentos lipídicos han sido asociados con funciones antioxidantes y fotoprotectoras, y también proporcionan a los huevos de Pomacea el color llamativo típico que funcionaría, en algunas especies, como señal de advertencia (i.e. aposematismo) para disuadir a los depredadores.[16]

Entre los componentes inorgánicos, el ion de calcio es el más abundante en el fluido perivitelino. Como estos caracoles tienen desarrollo directo, el calcio necesita ser almacenado para permitir el desarrollo de la concha del caracol durante la organogénesis. Además, el calcio es el componente principal de la cubierta de los huevos de aquellas especies de caracoles con oviposición aérea.[17]

Referencias

  1. a b c «Mollusca». Reproductive Biology of Invertebrates. I: Oogenesis, oviposition and oosorption. John Wiley and Sons. 1983. pp. 297-355. 
  2. Ferritin-Dotter bei der Schnecke Planorbarius corneus L. Verh. Dtsch. Zool. Ges.. Stuttgart: Gustav Fischer Verlag. 1977. p. 301. 
    «Development beyond the gastrula stage and digestive organogenesis in the apple-snail Pomacea canaliculata (Architaenioglossa, Ampullariidae)». Biocell 33 (1): 49-65. April 2009. PMID 19499886. doi:10.32604/biocell.2009.33.049. 
  3. «Comparing apples with apples: clarifying the identities of two highly invasive Neotropical Ampullariidae (Caenogastropoda)». Zoological Journal of the Linnean Society (en inglés) 166 (4): 723-753. 2012. ISSN 1096-3642. doi:10.1111/j.1096-3642.2012.00867.x. 
    «Pallial oviduct of Pomacea canaliculata (Gastropoda): ultrastructural studies of the parenchymal cellular types involved in the metabolism of perivitellins». Cell and Tissue Research 324 (3): 523-33. June 2006. PMID 16453107. doi:10.1007/s00441-005-0132-x. 
  4. a b c «Der galaktogengehalt der Eier von Lymnaea stagnalis während der embryonalentwicklung.». Biochem. Z. 328: 342-347. 1956. 
  5. «Biosynthesis in the Albumen Gland-Capsule Gland Complex Limits Reproductive Effort in the Invasive Apple Snail Pomacea canaliculata». The Biological Bulletin 235 (1): 1-11. August 2018. PMID 30160995. doi:10.1086/699200. 
  6. a b «Electro- and immunoelectrophoretic patterns of egg albumen of the pond snail Limnea palustris.». Acta Embryol. Morph. Exp. 7: 155-166. 1964. 
  7. a b c d «Biochemical composition and energy sources during embryo development and in early juveniles of the snail Pomacea canaliculata (Mollusca: Gastropoda)». Journal of Experimental Zoology 280 (6): 375-383. 1998. doi:10.1002/(SICI)1097-010X(19980415)280:63.0.CO;2-K. 
  8. a b c d «The eggs of the apple snail Pomacea maculata are defended by indigestible polysaccharides and toxic proteins». Canadian Journal of Zoology 94 (11): 777-785. 12 de septiembre de 2016. doi:10.1139/cjz-2016-0049. 
  9. «Chemical embriology of Mollusca». Chemical Zoology. New York: Academic Press. 1972. pp. 155-185. 
  10. «Bioactive molecules from sea hares». Molluscs. Progress in Molecular and Subcellular Biology 43. Berlin, Heidelberg: Springer. 2006. pp. 215-39. ISBN 978-3-540-30880-5. doi:10.1007/978-3-540-30880-5_10. 
  11. «Identification of protein components of egg masses indicates parental investment in immunoprotection of offspring by Biomphalaria glabrata (gastropoda, mollusca)». Developmental and Comparative Immunology 34 (4): 425-35. April 2010. PMC 2813990. PMID 19995576. doi:10.1016/j.dci.2009.12.001. 
  12. a b «Characterization of the major egg glycolipoproteins from the perivitellin fluid of the apple snail Pomacea canaliculata». Molecular Reproduction and Development 68 (3): 359-64. July 2004. PMID 15112330. doi:10.1002/mrd.20078. 
    «Novel animal defenses against predation: a snail egg neurotoxin combining lectin and pore-forming chains that resembles plant defense and bacteria attack toxins». PLOS ONE 8 (5): e63782. 30 de mayo de 2013. Bibcode:2013PLoSO...863782D. PMC 3667788. PMID 23737950. doi:10.1371/journal.pone.0063782. 
    «Insights into embryo defenses of the invasive apple snail Pomacea canaliculata: egg mass ingestion affects rat intestine morphology and growth». PLOS Neglected Tropical Diseases 8 (6): e2961. June 2014. PMC 4063725. PMID 24945629. doi:10.1371/journal.pntd.0002961. 
    «First egg protein with a neurotoxic effect on mice». Toxicon 52 (3): 481-8. September 2008. PMID 18640143. doi:10.1016/j.toxicon.2008.06.022. 
    «A lectin of a non-invasive apple snail as an egg defense against predation alters the rat gut morphophysiology». PLOS ONE 13 (6): e0198361. 1 de junio de 2018. Bibcode:2018PLoSO..1398361I. PMC 5983499. PMID 29856808. doi:10.1371/journal.pone.0198361. 
    «Non-digestible proteins and protease inhibitors: implications for defense of the colored eggs of the freshwater apple snail Pomacea canaliculata». Canadian Journal of Zoology 97 (6): 558-566. 1 de febrero de 2019. doi:10.1139/cjz-2018-0210. 
    «Convergent evolution of plant and animal embryo defences by hyperstable non-digestible storage proteins». Scientific Reports 7 (1): 15848. November 2017. Bibcode:2017NatSR...715848P. PMC 5696525. PMID 29158565. doi:10.1038/s41598-017-16185-9. 
    «Novel Role for Animal Innate Immune Molecules: Enterotoxic Activity of a Snail Egg MACPF-Toxin». Frontiers in Immunology (en inglés) 11: 428. 2020. PMC 7082926. PMID 32231667. doi:10.3389/fimmu.2020.00428. 
    «Exaptation of two ancient immune proteins into a new dimeric pore-forming toxin in snails». Journal of Structural Biology 211 (2): 107531. August 2020. PMID 32446810. doi:10.1016/j.jsb.2020.107531. 
  13. «Lipoproteins of the egg perivitelline fluid of Pomacea canaliculata snails (Mollusca: Gastropoda)». The Journal of Experimental Zoology 276 (5): 307-14. December 1996. PMID 8972583. doi:10.1002/(SICI)1097-010X(19961201)276:5<307::AID-JEZ1>3.0.CO;2-S. 
  14. a b «The major egg reserve protein from the invasive apple snail Pomacea maculata is a complex carotenoprotein related to those of Pomacea canaliculata and Pomacea scalaris». Comparative Biochemistry and Physiology. Part B, Biochemistry & Molecular Biology 169: 63-71. March 2014. PMID 24291422. doi:10.1016/j.cbpb.2013.11.008. 
  15. «First proteome of the egg perivitelline fluid of a freshwater gastropod with aerial oviposition». Journal of Proteome Research 11 (8): 4240-8. August 2012. PMID 22738194. doi:10.1021/pr3003613. 
    «Comparative proteomics and codon substitution analysis reveal mechanisms of differential resistance to hypoxia in congeneric snails». Journal of Proteomics 172: 36-48. February 2018. PMID 29122728. doi:10.1016/j.jprot.2017.11.002. 
    «Egg perivitelline fluid proteome of a freshwater snail: Insight into the transition from aquatic to terrestrial egg deposition». Rapid Communications in Mass Spectrometry 34 (7): e8605. April 2020. PMID 31657488. doi:10.1002/rcm.8605. 
  16. «Metabolism of ovorubin, the major egg lipoprotein from the apple snail». Molecular and Cellular Biochemistry 243 (1–2): 9-14. January 2003. PMID 12619883. doi:10.1023/a:1021616610241. 
    «Astaxanthin binding and structural stability of the apple snail carotenoprotein ovorubin». Archives of Biochemistry and Biophysics 460 (1): 107-12. April 2007. PMID 17324373. doi:10.1016/j.abb.2006.12.033. 
    «Egg carotenoproteins in neotropical Ampullariidae (Gastropoda: Arquitaenioglossa)». Comparative Biochemistry and Physiology. Toxicology & Pharmacology 146 (1–2): 158-67. 1 de julio de 2007. PMID 17320485. doi:10.1016/j.cbpc.2006.10.013. 
    «Isolation and characterization of a novel perivitellin from the eggs of Pomacea scalaris (Mollusca, Ampullariidae)». Molecular Reproduction and Development 75 (9): 1441-8. September 2008. PMID 18213678. doi:10.1002/mrd.20880. 
    «Antioxidant defense system in the apple snail eggs, the role of ovorubin». Archives of Biochemistry and Biophysics 422 (1): 1-8. February 2004. PMID 14725852. doi:10.1016/j.abb.2003.11.018. 
  17. «Studies on the reproductive biology of gastropods: Part III. Calcium provision and the evolution of terrestrial eggs among gastropods.». Journal of Conchology 30: 145-154. 1980. 
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